🔥 RayBiotech 美国原装进口 ELISA 年终大促:96T 全线 6 折,热门货号特价 ¥1,799 | 至 12.31 | 400-630-6163 →

缺氧微环境下HIF-1α(HIF1a)驱动的代谢重编程在巨噬细胞抗铁死亡中的作用与机制

2026年08月20日  |  分类:文献解读

本文要点

  • > 在生命科学的宏大叙事中,氧气不仅是能量代谢的基石,更是塑造细胞命运的关键信号分子
  • 在生命科学的宏大叙事中,氧气不仅是能量代谢的基石,更是塑造细胞命运的关键信号分子
  • 作为先天免疫系统的核心,巨噬细胞(Macrophages)表现出了惊人的环境适应能力,尤其是在肿瘤组织核心、缺血器官或慢性炎症病灶等极端缺氧(Hypoxia)微
  • 在这些区域,氧分压往往显著低于生理稳态水平,迫使巨噬细胞启动一套精密的分子防御机制以维持其生存与免疫稳态
  • 近年来,铁死亡(Ferroptosis)作为一种不同于凋亡和坏死的调节性细胞死亡方式,因其在炎症调节与肿瘤免疫中的核心地位而备受瞩目

在生命科学的宏大叙事中,氧气不仅是能量代谢的基石,更是塑造细胞命运的关键信号分子。

img_01.webp

在生命科学的宏大叙事中,氧气不仅是能量代谢的基石,更是塑造细胞命运的关键信号分子。作为先天免疫系统的核心,巨噬细胞(Macrophages)表现出了惊人的环境适应能力,尤其是在肿瘤组织核心、缺血器官或慢性炎症病灶等极端缺氧(Hypoxia)微环境中。在这些区域,氧分压往往显著低于生理稳态水平,迫使巨噬细胞启动一套精密的分子防御机制以维持其生存与免疫稳态。近年来,铁死亡(Ferroptosis)作为一种不同于凋亡和坏死的调节性细胞死亡方式,因其在炎症调节与肿瘤免疫中的核心地位而备受瞩目 。作为代谢重编程的枢纽,缺氧诱导因子-1α(Hypoxia-Inducible Factor-1α, HIF-1α)如何通过协调复杂的糖、脂、铁代谢通路,赋予巨噬细胞在极端应激下的“金刚不坏之身”,已成为当前细胞生物学与免疫代谢研究的前沿热点 。

常氧下HIF-1α的降解机制

本节要点:常氧下PHDs以氧气和α-KG为底物羟基化HIF-1α,经VHL识别后由蛋白酶体快速清除。

在常氧条件下,巨噬细胞内的HIF-1α处于极其活跃的周转状态。这种低水平的维持并非源于合成不足,而是由于一种高度依赖氧气的降解机制。脯氨酰羟化酶(Prolyl Hydroxylases, PHDs)作为细胞内的氧气传感器,利用氧气、和α-酮戊二酸(α-KG)作为底物,对HIF-1α蛋白序列中的特定脯氨酸残基进行羟基化修饰 。这一化学修饰标志着HIF-1α被von Hippel-Lindau(VHL)E3泛素连接酶复合物识别,随后经由26S蛋白酶体途径彻底清除。

然而,当微环境进入缺氧状态,PHDs的活性因底物氧气的匮乏而受到抑制。此外,在巨噬细胞激活过程中积累的琥珀酸(Succinate)也会作为PHDs的竞争性抑制剂,干扰其对HIF-1α的修饰 。这种双重的“刹车”失效导致HIF-1α在胞质内迅速积累,并转位至细胞核内。在核内,它与组成型表达的HIF-1β亚基结合,形成功能性的异源二聚体,精准识别并结合在目标基因启动子区域的低氧反应元件(Hypoxia Response Elements, HREs)上,从而拉开了一场史诗般的代谢重编程序幕 。

缺氧下HIF-1α驱动糖酵解转向

本节要点:缺氧时HIF-1α上调GLUT1、HK2、PFK1与PKM2,并经PDK1抑制PDH,使巨噬细胞转向有氧糖酵解。

巨噬细胞在HIF-1α的驱动下,最直观的改变是能量代谢模式的剧烈转向。为了在低氧条件下维持ATP的供应并减少线粒体ROS的生成,巨噬细胞表现出显著的有氧糖酵解增强,这一现象在免疫代谢领域被赋予了深刻的功能意义 。

HIF-1α是葡萄糖转运蛋白1(GLUT1)和一系列糖酵解限速酶的强效转录激活因子。在缺氧的巨噬细胞中,GLUT1的表达水平可提升数倍,确保了充足的碳源摄入 。随后的己糖激酶2(HK2)、磷酸果糖激酶1(PFK1)以及丙酮酸激酶M2(PKM2)在HIF-1α的诱导下,大幅提升了糖酵解的整体通量。这种代谢流的转向不仅是为了生存,更是为了极化功能的实现。例如,核转位的PKM2能够进一步增强HIF-1α的转录活性,形成一个旨在最大化糖酵解流的正反馈环路 。

在常氧条件下,丙酮酸通常进入线粒体进行三羧酸循环(TCA)。而在缺氧微环境中,HIF-1α诱导丙酮酸脱氢酶激酶1(PDK1)的表达,通过磷酸化抑制丙酮酸脱氢酶(PDH),阻断了丙酮酸向乙酰辅酶A(Acetyl-CoA)的转化 。这一过程不仅减少了线粒体氧化磷酸化的负担,更重要的是,它降低了电子传递链产生超氧化物的风险,而这正是触发脂质过氧化的重要上游因素。最终,大量的丙酮酸在乳酸脱氢酶A(LDHA)的作用下转化为乳酸并排出胞外,维持了细胞内的氧化还原平衡 。

铁死亡的执行与铁依赖脂质过氧化

本节要点:铁死亡由铁依赖的脂质过氧化驱动,伴随GSH耗竭、GPX4失活及ROS对多不饱和脂肪酸的攻击。

要理解巨噬细胞如何抵抗铁死亡,首先必须剖析铁死亡的执行过程。铁死亡是一种由铁依赖性脂质过氧化(Lipid Peroxidation)驱动的细胞死亡形式 。其生化特征包括谷胱甘肽(GSH)的枯竭、谷胱甘肽过氧化物酶4(GPX4)失活以及活性氧(ROS)对多不饱和脂肪酸(PUFAs)的持续攻击 。

铁是铁死亡的灵魂。细胞内存在一个由不稳定二价铁组成的游离铁库(Labile Iron Pool, LIP)。在过氧化物存在的情况下,通过芬顿反应产生破坏性极强的羟基自由基:

img

这些自由基会攻击细胞膜上磷脂(PLs)中所含的PUFAs,引发自发的链式过氧化反应,最终导致生物膜物理完整性的丧失和功能性膜蛋白的失活 。

脂质过氧化的程度在很大程度上取决于膜脂的成分。酰基辅酶A合成酶长链家族成员4(ACSL4)是铁死亡的“合谋者”,它偏好于催化花生四烯酸(AA)和肾上腺酸(AdA)等PUFAs转化为相应的脂肪酰辅酶A,并最终嵌入磷脂膜中 。这些含有双键的PUFAs是脂质过氧化的理想底物。

抗氧化轴与脂质去饱和防线

本节要点:HIF-1α通过SLC7A11-GSH-GPX4轴强化抗氧化,并借SCD1增加MUFA以降低膜脂可燃性。

面对脂质过氧化的威胁,HIF-1α在巨噬细胞中构建的第一道防线是强化内源性抗氧化系统。最为核心的即是System-GSH-GPX4轴 。

System是一个异二聚体氨基酸转运蛋白,由轻链亚基SLC7A11和重链亚基SLC3A2组成。HIF-1α在缺氧条件下能直接诱导SLC7A11的表达,或者通过调节其伴侣蛋白增强其在质膜上的稳定性 。增加的SLC7A11确保了大量外源性胱氨酸(Cystine)进入胞内,并迅速还原为半胱氨酸。半胱氨酸是合成GSH的限速原料,而GSH则是GPX4清除脂质过氧化物所必需的电子供体 。

GPX4作为抗铁死亡的核心执行官,利用GSH将磷脂氢过氧化物(PL-OOH)还原为无害的脂肪醇(PL-OH) :

img

最近的研究表明,在特定的巨噬细胞亚群中,HIF-1α能够通过直接转录激活GPX4基因,显着增强其蛋白表达水平。这种在源头上增加“灭火器”数量的策略,使得巨噬细胞在缺氧和高铁环境下依然能够维持较低水平的膜脂损伤。下表总结了HIF-1α调控下的主要抗铁死亡防御分子及其机制:

防御组分 关键蛋白 HIF-1α调控效应 在抗铁死亡中的生物学意义 系统

SLC7A11

直接转录激活/增强稳定性

提升胞内GSH合成,增强氧化还原缓冲容量

核心过氧化酶

GPX4

诱导表达

直接中和膜脂过氧化物,防止膜完整性受损

葡萄糖转运

GLUT1

显着上调

增加糖酵解底物,为下游代谢提供碳源

铁调控因子

FPN (SLC40A1)

促进转录

增加胞内铁流出,压缩游离铁库(LIP)

脂质去饱和

SCD1

诱导表达

增加膜MUFA含量,通过竞争机制降低膜敏感性 如果说GPX4是“灭火器”,那么HIF-1α驱动的脂质重编程则是通过“阻燃改造”从根本上降低了铁死亡发生的几率。在巨噬细胞中,这一过程主要由硬脂酰辅酶A去饱和酶1(SCD1)和脂肪酸去饱和酶2(FADS2)介导 。

SCD1是催化饱和脂肪酸(SFAs)向单不饱和脂肪酸(MUFAs)转化的关键酶 。HIF-1α在缺氧条件下能够直接结合在SCD1启动子区,强力诱导其表达。产生的MUFAs,如油酸,能够产生双重保护效应:一方面,MUFAs不含双键间的活泼氢,本身对过氧化反应具有极高的抗性;另一方面,MUFAs会竞争性地替代细胞膜磷脂中的PUFAs,从而显著降低了膜脂的“可燃性” 。这种脂质谱系的重写,是巨噬细胞在极端缺氧环境下能够实现铁死亡耐受的核心机制。

除膜脂成分调整外,HIF-1α还诱导巨噬细胞形成大量的脂质液滴(Lipid Droplets)。SCD1和FADS2不仅参与膜脂重组,还促进中性脂肪在液滴中的螯合。这种液滴化过程可以被视为一种“代谢蓄水池”,它能够将过量的游离脂肪酸从不稳定的代谢池中移走,防止它们作为铁死亡的底物参与氧化应激。

HIF-1α调控铁转运与铁蛋白

本节要点:缺氧下HIF-1α增加FPN转录以抵消铁调素作用,并抑制NCOA4介导的铁蛋白自噬,压缩游离铁库。

作为负责全身铁循环的哨兵,巨噬细胞必须在铁的储存与释放之间维持脆弱的平衡。在缺氧微环境中,HIF-1α通过调控铁转运蛋白(Ferroportin, FPN)和铁蛋白(Ferritin)的表达,实现了胞内的“去铁化”,从而切断了芬顿反应的物质来源 。

FPN是目前已知唯一的细胞铁出口蛋白。在常氧条件下,铁调素(Hepcidin)会诱导FPN的内吞降解。而在缺氧状态下,HIF-1α能够直接增加FPN的转录,这在很大程度上抵消了铁调素的负调节作用 。通过加速将胞内游离铁排出至循环系统,巨噬细胞有效降低了不稳定铁库(LIP)的大小,使得即使在ROS水平较高的环境下,也难以触发大规模的铁依赖性脂质过氧化。

除了外排,HIF-1α还调节铁蛋白重链(FTH1)和轻链(FTL)的丰度。铁蛋白能够以一种极其安全且惰性的方式包裹多达4500个铁原子。在缺氧应激下,HIF-1α不仅稳定了铁蛋白的表达,还抑制了由核受体共激活因子4(NCOA4)介导的铁蛋白自噬(Ferritinophagy),防止了铁离子的突然释放 。这种对铁离子的严密监控,构成了巨噬细胞抗铁死亡的物理基础。

所有的抗氧化酶最终都需要电子的供应。在HIF-1α驱动的糖代谢重构中,一个常被忽视但至关重要的分支是磷酸戊糖途径(PPP)。HIF-1α能够上调葡萄糖-6-磷酸脱氢酶(G6PD)的活性,从而加速NADPH的产生 。

NADPH在抗铁死亡中扮演着决定性的幕后推手角色。它是谷胱甘肽还原酶(GR)将氧化型谷胱甘肽(GSSG)还原为GSH所必需的辅因子 。此外,NADPH也是铁死亡抑制蛋白1(FSP1)催化泛醇(CoQH2)再生的唯一电子供体 。

img

可以说,没有NADPH的支撑,SLC7A11和GPX4构建的防御体系将如无源之水。HIF-1α通过强化PPP,确保了巨噬细胞拥有充足的“还原型货币”来应对缺氧微环境中的持久战。

M1与M2巨噬细胞的铁死亡敏感性差异

本节要点:M1型依赖糖酵解与PPP,HIF-1α活性高、抗铁死亡能力强;M2型依赖脂肪酸氧化,相对更易感。

巨噬细胞的高度可塑性表现在其极化状态。传统的M1型(促炎型)和M2型(修复型)在铁死亡敏感性上表现出巨大的差异,而这背后的核心差异正是由HIF-1α定义的代谢特征 。

M1型巨噬细胞主要依赖有氧糖酵解,这使其与HIF-1α的调控网络高度重合。M1型巨噬细胞展现出极高的SLC7A11表达水平和NADPH产率,这赋予了它们天生的铁死亡抵抗力 。这种抗性使其能够在伴随高ROS生成的炎症现场长时间存活,执行病原体清除功能。

相比之下,M2型巨噬细胞更依赖脂肪酸氧化(FAO)和线粒体氧化磷酸化,其HIF-1α活性相对较低。由于缺乏高强度的糖酵解和PPP支持,M2型巨噬细胞在面对同等强度的铁死亡诱导剂时表现得更为脆弱 。

下表对比了不同极化状态巨噬细胞的铁死亡敏感性特征:

特征 M1 巨噬细胞 M2 巨噬细胞 主导代谢通路

有氧糖酵解 / 磷酸戊糖途径

脂肪酸氧化 / 氧化磷酸化

HIF-1α 活性

极高

较低

SLC7A11 / GPX4 水平

显着上调

基础表达

铁死亡敏感性

极低(高抵抗力)

较高(易感性) HIF-1α驱动的代谢重编程不仅是巨噬细胞的基础生理过程,更是多种重大疾病发生发展的核心驱动力。在肿瘤微环境中,巨噬细胞(TAMs)利用HIF-1α诱导的抗铁死亡机制在极端缺氧区存活并持续分泌促癌细胞因子 。诱导这些巨噬细胞发生铁死亡,已成为通过靶向肿瘤基质来增强免疫疗法敏感性的创新路径。此外,在急性肾损伤或心肌梗死中,通过激活HIF-1α信号通路来预增强巨噬细胞的代谢防御,可能成为减轻器官损伤的有效手段 。

随着RayBiotech推出一系列高通量信号通路芯片,信号通路间的Crosstalk效应及信号通路的研究也变得越来越有开创性,以下几款信号通路芯片可助力各科学家的信号通路科研工作:

一、mTOR Pathway Screening Array,人mTOR信号通路筛选芯片,货号:AAH-BLG-TOR,一次筛选检测人mTOR信号通路中的118个关键蛋白的相对表达情况,适用于血清,血浆,细胞培养上清,组织裂解液及细胞裂解液等。118个蛋白靶标列表如下:

img_05.png

二、NF-kappa B Pathway Screening Array,人NF-kappa B信号通路筛选芯片,货号:AAH-BLG-NFK,一次筛选检测NF-kappa B信号通路上的90个关键蛋白的相对表达水平,适用于血清,血浆,细胞培养上清,组织裂解液及细胞裂解液等。90个蛋白靶标列表如下:

img_06.png

综上所述,缺氧微环境下的HIF-1α不仅是一个被动的生存因子,更是一个主动的代谢建筑师。它通过跨越糖、脂、铁、还原力四个维度的代谢重构,在巨噬细胞周围构筑了一道密不透风的生化屏障。这种机制的复杂性不仅体现了细胞演化的精密性,也为我们理解复杂疾病提供了全新的坐标。巨噬细胞对铁死亡的抵抗,绝非单一基因的偶然胜利,而是整个细胞代谢系统在HIF-1α指挥下,对生命极限挑战做出的一场优雅而强力的回应。

本文主要参考文献

  1. Dixon, S. J., Lemberg, K. M., Lamprecht, M. R., Skouta, R., Zaitsev, E. M., Gleason, C. E., … & Stockwell, B. R. (2012). Ferroptosis: an iron-dependent form of nonapoptotic cell death. cell, 149(5), 1060-1072.
  1. Stockwell, B. R. (2022). Ferroptosis turns 10: Emerging mechanisms, physiological functions, and therapeutic applications. Cell, 185(14), 2401-2421.

3. Yang, Z., Su, W., Wei, X., Qu, S., Zhao, D., Zhou, J., … & Yao, B. (2023). HIF-1α drives resistance to ferroptosis in solid tumors by promoting lactate production and activating SLC1A

1. Cell reports, 42(8).

  1. Tannahill, G. Á., Curtis, A. M., Adamik, J., Palsson-McDermott, E. M., McGettrick, A. F., Goel, G., … & O’neill, L. (2013). Succinate is an inflammatory signal that induces IL-1β through HIF-1α. Nature, 496(7444), 238-242.
  1. Zhang, D., Tang, Z., Huang, H., Zhou, G., Cui, C., Weng, Y., … & Zhao, Y. (2019). Metabolic regulation of gene expression by histone lactylation. Nature, 574(7779), 575-580.
  1. Jiang, X., Stockwell, B. R., & Conrad, M. (2021). Ferroptosis: mechanisms, biology and role in disease. Nature reviews Molecular cell biology, 22(4), 266-282.
  1. Bersuker, K., Hendricks, J. M., Li, Z., Magtanong, L., Ford, B., Tang, P. H., … & Olzmann, J. A. (2019). The CoQ oxidoreductase FSP1 acts parallel to GPX4 to inhibit ferroptosis. Nature, 575(7784), 688-692.
  1. Kapralov, A. A., Yang, Q., Dar, H. H., Tyurina, Y. Y., Anthonymuthu, T. S., Kim, R., … & Kagan, V. E. (2020). Redox lipid reprogramming commands susceptibility of macrophages and microglia to ferroptotic death. Nature chemical biology, 16(3), 278-290.
  1. Xuan, Y., Wang, H., Yung, M. M., Chen, F., Chan, W. S., Chan, Y. S., … & Chan, D. W. (2022). SCD1/FADS2 fatty acid desaturases equipoise lipid metabolic activity and redox-driven ferroptosis in ascites-derived ovarian cancer cells. Theranostics, 12(7), 3534.

1

0. Zheng, J., & Conrad, M. (2025). Ferroptosis: when metabolism meets cell death. Physiological Reviews, 105(2), 651-706.

线粒体研究专题

线粒体自噬(Mitophagy)是代谢重编程(Metabolic Reprogramming)的“因”还是“果”?这个问题可能问错了

cGAS-STING 遇上铁死亡(Ferroptosis):线粒体 DNA 释放引发的细胞内稳态风暴

一文读懂线粒体:线粒体动力学/代谢重编程/自噬/PINK1/Parkin通路/BNIP3L/Nix和FUNDC1通路

一文读懂线粒体自噬(mitophagy)信号通路PINK1/Parkin通路及“微自噬”(MDVs)及多因子芯片

线粒体自噬Mitochondrial Autophagy—mitophagy:线粒体自噬机制,从PDR到Parkin/PINK1

当线粒体自噬(mitophagy)遇上铁死亡“Ferroptosis”:细胞命运的博弈与平衡

外周免疫耐受专题

诺贝尔生理学或医学奖—调节性T细胞(Tregs):外周免疫耐受的信号转导网络(PI3K/AKT/mTOR/TGF-β等信号通路)

诺贝尔生理学奖—外周免疫耐受机制及其相关信号通路(PI3K-Akt/TGF-beta)深度解析:从Foxp3到免疫治疗的平衡艺术

信号通路研究专题

TGFb信号通路/TGFbeta信号通路(TGFβ Signaling Pathway)研究,看这一篇就够啦

p53信号通路(p53 Signaling Pathway)研究,看这篇就够啦

MAPK信号通路(MAPK Signaling Pathway)研究,看这一篇就够啦!

NF-kB Signaling Pathway研究,看这一篇就够了

JAK/STAT信号通路/JAK-STAT信号通路/JAK-STAT Signaling Pathway研究,看这一篇就够了

mTOR(mammalian target of rapamycin)信号通路signaling pathway研究看这一篇就够

PI3K-AKT信号通路(PI3K-AKT Signaling Pathway)研究,看这篇就够啦

AMPK 信号通路(AMPK Signaling Pathway)研究,看这篇就够啦

Wnt信号通路/WntβCatenin信号通路/WntβCatenin Pathway研究,看这一篇就够了

ErbB信号通路(ErbB Signaling Pathway)研究,看这一篇就够了

IGF-1 信号通路(insulin-like growth factor signaling pathway)研究看这篇就够啦

HIF1-a信号通路/HIF1-α信号通路(HIF1-alpha Signaling Pathway)研究,看这一篇就够啦

Hedgehog 信号通路(Hedgehog Signaling Pathway)研究,看这一篇就够啦!

重磅!PI3K-AKT/JAKSTAT/AMPK/Wnt/ErbB/IGF1/HIF1a/mTOR等十三条高清信号通路图大汇总

Notch信号通路(Notch Signaling Pathway)研究,看这一篇就够啦!

PKC信号通路/PKCθ信号通路(PKC-Theta Signaling Pathway)研究,看这一篇就够啦!

PPAR信号通路(PPAR Signalling Pathway) 研究,看这一篇就够啦 !

代谢信号通路(Metabolic Signaling Pathway)研究,看这一篇就够啦!

AMPK信号通路(AMPK Signaling Pathway)调控网络的深度解析与前沿洞察—能量代谢的“总司令”的任务分配

HIF1a信号通路/HIF1α信号通路(HIF1-alpha Signaling Pathway):细胞氧气银行的智慧调控网络

Wnt信号通路(WntβCatenin Signaling Pathway)的调控网络:从配体分泌到三维基因组重塑的精准控制

img_07.jpg

常见问题

缺氧微环境中的巨噬细胞如何维持稳态?

在肿瘤组织核心、缺血器官或慢性炎症病灶等极端缺氧区域,巨噬细胞启动一套精密的分子防御机制以维持生存与免疫稳态;铁死亡在炎症调节与肿瘤免疫中的核心地位备受瞩目。

← 返回技术文章列表