WB 转膜怎么做?PVDF 膜与 NC 膜选择、甲醇活化与大小蛋白转膜条件

2026年10月18日  |  分类:技术文章

最后审核:2026 年 10 月 18 日

Western blot 条带弱、斑驳、不均匀,很多时候问题不在抗体,而在转膜。本文按实验顺序讲清 PVDF 膜和硝酸纤维素膜(NC 膜)怎么选、0.2 µm 和 0.45 µm 孔径怎么选、PVDF 为什么必须先用甲醇活化,以及大分子、小分子蛋白转膜条件怎么调。

要点速览

  • PVDF 膜结合蛋白能力强、机械强度高,适合低丰度靶标和剥离再孵育(stripping/reprobing);NC 膜背景通常更低,常规检测够用。
  • 多数蛋白用 0.45 µm;约 20 kDa 以下的小蛋白和多肽用 0.2 µm,防止穿膜。
  • PVDF 必须先在 100% 甲醇中活化 15–30 秒,变均匀半透明后再水洗、转膜液平衡;活化后全程不能干。
  • 转膜”三明治”从负极到正极:海绵—滤纸—凝胶—膜—滤纸—海绵,膜在凝胶的正极一侧。
  • 大蛋白降甲醇、加少量 SDS、延长时间;小蛋白用 0.2 µm 膜、缩短时间。
  • 封闭前用丽春红 S(Ponceau S)检查转膜是否均匀。

PVDF 膜还是 NC 膜?

对比项 PVDF 膜 NC 膜(硝酸纤维素)
蛋白结合 疏水结合,结合量更高 结合良好,低于 PVDF
预处理 必须先甲醇活化 直接用转膜液浸湿
机械强度 强,耐剥离再孵育 较脆,干燥后易碎
背景 可能偏高,需充分封闭 通常较低
适用 低丰度靶标、多次检测同一张膜、N 端测序 常规 WB;低荧光型号可做荧光检测

孔径:0.2 µm 还是 0.45 µm?

0.45 µm 适合绝大多数蛋白。分子量约 20 kDa 以下的小蛋白、多肽(如部分细胞因子、组蛋白、LC3 等)在转膜电流下容易穿过大孔径膜,建议换 0.2 µm。判断是否穿膜的简单办法:在第一张膜后面再垫一张膜,转完后两张都做丽春红染色,第二张上出现条带说明发生了穿膜。

PVDF 转膜操作步骤

  1. 活化膜:PVDF 膜按凝胶大小裁好,放入 100% 甲醇 15–30 秒,至整张膜均匀变为半透明;用纯水短暂漂洗,再放入预冷转膜液平衡数分钟。活化后的膜一旦干了,要重新用甲醇活化。
  2. 平衡凝胶:电泳结束后把凝胶放在转膜液中平衡几分钟,减少转膜中凝胶收缩或溶胀造成的条带变形。
  3. 装”三明治”:从负极(黑色)到正极(红色)依次为海绵、滤纸、凝胶、膜、滤纸、海绵。SDS 包裹的蛋白带负电,向正极移动,所以膜一定在凝胶靠正极的一侧。
  4. 赶气泡:每铺一层用滚轴或玻璃棒轻轻赶走气泡;任何一个气泡都会在膜上留下空白斑。
  5. 转膜:湿转(槽式)适用分子量范围最宽、最稳定,常用 Towbin 转膜液(25 mM Tris、192 mM 甘氨酸、20% 甲醇);半干转和快速转膜系统更省时。湿转要放冰盒或在冷室进行,防止过热。
  6. 检查转膜:封闭前用丽春红 S 染色,确认条带均匀、无气泡斑;拍照留档,还可作为总蛋白上样参考,之后用 TBST 洗掉即可。

大分子和小分子蛋白怎么调?

情况 调整方法 原因
大蛋白(约 100–150 kDa 以上) 甲醇降到 10% 或更低;转膜液加少量 SDS(不超过约 0.1%);用低浓度胶或梯度胶;延长转膜时间 甲醇使凝胶孔径收缩,阻碍大蛋白洗脱;SDS 帮助蛋白离开凝胶
小蛋白(约 20 kDa 以下) 用 0.2 µm 膜;保持 20% 甲醇;缩短转膜时间 防止蛋白穿过膜;甲醇促进蛋白结合到膜上
同一张胶大小都要 湿转、适中时间,必要时把胶按分子量切开分别转 兼顾两端

常见问题排查

现象 常见原因 处理
膜上有圆形空白斑 三明治中有气泡 逐层赶气泡,滤纸和海绵充分浸透
PVDF 局部无信号 活化不充分或中途变干 甲醇活化至整张半透明,转膜前后保持湿润
大蛋白条带很弱 洗脱不完全 降甲醇、加少量 SDS、延长时间
小蛋白消失 穿膜 换 0.2 µm 膜,缩短时间,垫第二张膜验证
条带扭曲、发”笑” 过热或凝胶未平衡 冰浴转膜,转膜前平衡凝胶
背景整体偏高 封闭不足、抗体浓度过高 延长封闭,重新滴定一抗和二抗

转膜之后:抗体与多指标检测

转膜质量稳定之后,结果好坏主要取决于一抗是否特异。RayBiotech 提供大量经 WB 验证的一抗,货号、种属反应性和推荐稀释度可在 RayBiotech 抗体产品列表中查询,例如 HSP90AB1 抗体、iNOS (NOS2) 抗体、IL-1β 抗体。如果要同时看几十个蛋白,可以考虑基于膜的抗体芯片,原理和 WB 相近,一次检测多个指标,详见膜抗体芯片:高通量的”WB”。

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参考文献

  1. Towbin H, Staehelin T, Gordon J. Electrophoretic transfer of proteins from polyacrylamide gels to nitrocellulose sheets: procedure and some applications. PNAS. 1979;76(9):4350–4354.
  2. Kurien BT, Scofield RH. Western blotting. Methods. 2006;38(4):283–293.

仅供科研使用。

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